На главную Написать письмо редактору сайта Поиск по сайту
 
 
информационный стоматологический сайт
 
Главная
Новости
Новинки
Статьи
 Ортопедическая
 Терапевтическая
 Зуботехническая
 Имплантология
 Менеджмент
Фотогалерея
Форумы
Конкурс
База
Гостевая
Статистика
Вакансии
Резюме
Запись на прием
СтоматТоп
Справочник
Юмор
Рекламодателям
Поиск по сайту
Контакты
Эксперимент
ДентаВики
Каталог книг
Меценатам
Карта



Новая возможность
- чтобы быть в курсе последних обновлений, Вы можете подписаться на новости нашего сайта.
Подписаться:
E-mail:
 


Рейтинг@Mail.ru





Гидроокись кальция в эндодонтии: обратная сторона монеты. Критический обзор литературы.

Автор:


Антанян А.А.- канд. мед. наук, мастер эндодонтии.

Сайт: www.googmed.com
Эл. почта: infogoogmed@gmail.com

Введение

Причиной возникновения пульпита и периодонтита в первую очередь является наличие микроорганизмов в системе корневых каналов (Sundqvist 1976, Moller et al. 1981). Микробиологические исследования показали, что в зубах с некротической пульпой и воспалением вокруг корня, преобладают грамм-отрицательные факультативные анаэробы (Assed et al. 1996, Abou-Rass & Bogen 1998) [6,54,67].

Сложная анатомия корневых каналов обеспечивает благоприятную среду для роста, размножения и взаимодействия микроорганизмов. Они присутствуют во всех частях корневых каналов, включая боковые каналы, анастамозы и дентинные канальцы в глубине до 300 микрон со стороны пульпы (Horiba et al. 1990). Микробы получают питание от живой или некротической пульпы, белков слюны и тканевой жидкости периодонта, от других бактерий. Кроме воздействия на ткани, у микробов есть продукты жизнедеятельности, которые токсичны для периодонта. После лечения некоторые стойкие микроорганизмы, такие как Enterococcus Faecalis и Candida Albicans, могут поддерживать периодонтит и определять неудачный исход эндодонтического лечения [4,27,33,46,49, 68].

Следовательно, логической задачей лечения апикальных периодонтитов является устранение максимального количества бактерий и предупреждение повторного инфицирования. Исход лечения корневых каналов зависит от уменьшения количества или полного уничтожения бактерий внутри зуба, т. е. от эффективности хемомеханического препарирования.

Механическая инструментальная обработка уменьшает количество микроорганизмов в 100-1000 раз, но полное их отсутствие в корневом канале наблюдается только в 20-43% случаев. Использование антибактериального орошения 0.5% раствором гипохлорита натрия увеличивает это число до 40-60% [11,64,67]. Однако доказано, что невозможно добиться полной дезинфекции во всех случаях, даже после очистки, формирования и ирригации дезинфицирующими и антисептическими растворами. Некоторые авторы считают, что в случае инфицирования необходимо каналы лечить в два посещения и тогда количество оставшихся микроорганизмов можно контролировать, используя внутриканальные повязки из гидроокиси кальция. Другие авторы предлагают предотвратить рост оставшихся микроорганизмов, лишая их питания и жизненного пространства, путем полноценной обработки, дезинфекции и трёхмерного пломбирования каналов во время первого посещения.

Механизмы антибактериальной активности гидроокиси кальция

Полная хемомеханическая обработка рассматривается как важнейший этап дезинфекции корневого канала. Однако получить полное уничтожение бактерий на практике очень трудно. Считается, что внутриканальные медикаменты уничтожают сохранившихся бактерий. Такие препараты должны иметь широкий спектр антибактериального действия, быть не токсичными и обладать физико-химическими свойствами, позволяющими диффундировать через дентинные канальца и латеральные каналы корневой системы [39, 56].

Гидроокись кальция в эндодонтии широко используется начиная с 1920 года. Это щелочное вещество, рН которого приближается к 12,5. В водном растворе гидроокись кальция распадается на ионы кальция и гидроксильные ионы. Этому веществу присвоены различные биологические свойства, такие как бактерицидная активность, растворение органических тканей, торможение резорбции зуба и активация регенерации костной ткани. Благодаря этим «свойствам» гидроокись кальция широко используются в эндодонтии для лечения инфицированных зубов, апексификсации, закрытия перфораций и при лечении воспалительной резорбции корня.

Бактерицидная активность препарата связана с высвобождением гидроксильных ионов в водной среде. Гидроксильные ионы представляют собой высокоактивные свободные радикалы, которые крайне активны при взаимодействии с некоторыми молекулами. Из-за высокой реактивности свободные радикалы редко могут диффундировать глубоко из участков образования. Их уничтожающее воздействие на бактериальные клетки, вероятно, объясняется следующими механизмами: повреждение цитоплазматической мембраны бактериальной клетки, денатурация белков, повреждение ДНК [39].

Дезинфекция корневого канала

Некоторые in vitro исследования демонстрировали, что гидроокись кальция оказывает разрушающий эффект на бактериальную клетку. Этот эффект наблюдается только тогда, когда гидроокись находится в прямом контакте с бактериальной клеткой в растворе. В таких условиях концентрация гидроксильных ионов настолько высока, что невозможно выживание бактерий. Однако в клинике такой плотный контакт не всегда возможен [56].

Уничтожение бактерий гидроокисью кальция зависит от концентрации гидроксильных ионов. Высокая концентрация наблюдается только там, где накладывается паста. Около основного канала рН гидроокиси кальция резко снижается из-за буферных систем (бикарбонатной или фосфатной), кислот, протеинов. Тогда его антибактериальная активность слабеет или замедляется [27].

Для эффективного действия гидроокиси кальция в качестве внутриканальной повязки гидроксильные ионы должны диффундировать сквозь дентин и остатки пульпы. Исследования обнаружили, что гидроксильные ионы могут диффундировать через корневой дентин. Однако уровень рН уменьшается в наиболее отдаленных от основного канала участках. В канале рН бывает 12-12,5. В прилегающем дентине, где имеется плотный контакт с гидроокисью, рН варьирует от 8 до 11, а в глубине дентина значения рН 7-9.

Nerwich et al. (1993) исследовали изменения рН на протяжении четырех недель после аппликации гидроокиси кальция. В апикальной части рН внутреннего дентина достигал 9,5 через две недели. В наружных слоях дентина рН изменялся медленнее и максимального уровеня 9 достиг через две недели. рН внутреннего дентина пришеечной области достиг 10,8 за 24 часа и стабильно держался на уровне 10. рН наружного дентина пришеечной области достигал 9 через две недели. Эти результаты свидетельствуют о том, что аппликации из гидроокиси кальция на одну неделю поднимают рН внутреннего дентина до 9. Такой уровень рН в дентине может допускать выживание и рост некоторых видов бактерий [8].

Бактерии отличаются по стойкости к изменениям рН и большинство микробов размножаются при значений рН 7-9. Некоторые штаммы Escherichia coli, Proteus vulgaris, Enterobacter aerogenes и Pseudomonas aeruginosa могут выживать при рН 8-9. Эти штаммы обычно являются причиной вторичной инфекции. Определенные бактерии, такие как энтерококки, устойчивы к рН 9-11. Большинство грибков тоже проявляют устойчивость к значениям рН 5-9 [19, 27].

Для того чтобы проявлять антибактериальную активность внутри дентинных канальцев, гидроксильные ионы должны диффундировать в дентин в достаточном количестве. Показано, что дентин обладает буферными свойствами (наличие H2P04, H2C03, и HC03 в гидроксиапатите), необходимыми для поддержания постоянного рН [27]. Следовательно, чтобы иметь антибактериальный эффект в дентинных канальцах, ионы из гидроокиси кальция должны превышать буферную способность дентина, достигая значения рН достаточного для уничтожения бактерий.

После кратковременного использования гидроокиси кальция гидроксильные ионы, вероятно, уничтожают микроорганизмов только у входа в канальцы. Бактерии в некротических тканях, ответвлениях, перешейках тоже защищены от воздействия гидроокиси кальция, путём нейтрализации рН. Следовательно, при кратковременном применении гидроокиси уничтожаются бактериальные клетки в основном канале или в парапульпарном дентине, где имеется тесный контакт с повязкой [56,58].

После применения внутриканальных медикаментов бактерии могут выживать несколькими способами:

1)бактерии в корневом канале могут быть устойчивыми к медикаменту;

2)бактериальные клетки могут быть далеки от воздействия медикамента (канальцы, боковые каналы);

3)медикамент может нейтрализоваться тканевыми компонентами (буферными системами) или продуктами бактериальных клеток;

4)медикамент может оставаться в корневом канале недостаточное время для уничтожения бактерий;

5)бактерии могут изменить свои свойства (гены) после изменения окружающей среды, что помогает им выжить в неблагоприятных условиях [56].

Siqueira и Uzeda (1996) выявили, что за одну неделю, гидроокись кальция в физиологическом растворе неэффективен для уничтожения E. Faecalis и F. Nucleatum в дентинных канальцах. А паста гидроокиси кальция с парамонохлорфенолом и глицерином эффективно уничтожала бактерий в канальцах, включая E. Faecalis за 24 часа применения. Эта паста обладает выраженной антибактериальной активностью против анаэробных бактерий по сравнению с пастами на основе инертных растворов [44]. Исследования доказывают, что парамонохлорфенол усиливает антибактериальную активность гидроокиси кальция [63].

Обсуждение

Часто внутриканальные медикаменты не достигают бактерий, локализующиеся в перешейках, ответвлениях и дентинных канальцах. Так же в глубоких участках системы каналов остаются питательные вещества для бактерий (остатки пульпы, кровь). Эти популяции микробов могут размножаться, быстро заселять каналы и поддержать периапикальное воспаление. Но при качественной обтурации системы каналов в труднодоступных участках бактерии обычно погибают из-за блокады корневой пломбой. В таких случаях, если даже выживают, то лишены доступа в периодонтальные ткани. Если корневая пломба недостаточно герметична, то просачивающиеся тканевая жидкость может стать питательным веществом для бактериального роста.

Микробы, связанные с неудачами эндодонтического лечения, значительно отличаются от микробного состава в нелеченых зубах (первичная внутриканальная инфекция). В первичной инфекции обычно наблюдается один или несколько видов бактерий, без очевидного преобладания факультативно анаэробных форм. В каналах со вторичной инфекцией (леченные зубы) в основном присутствует смешанный состав микробов, где доминируют грамм-отрицательные анаэробные штаммы. После неудачного лечения анаэробные бактерии составляют 51% от выделенных штаммов, а в 29-38% случаев обнаруживается E. Faecalis. Он чрезвычайно устойчив к некоторым медикаментам, включая гидроокись кальция [1,8].

Дрожжеподобные микроорганизмы обнаружены в запломбированных каналах зубов с неудачным исходом лечения. Фактически показано, что Candida Albicans устойчив к медикаментам, обычно применяемым в эндодонтии [10]. Siren и соав. (2004) показали, что E. Faecalis часто встречается:

а) когда каналы остаются незаполненными между посещениями;

б) когда число посещений увеличивается;

в) в случаях повторного лечения.

В 33% случаев E. Faecalis встречается как моноинфекция [1, 6].

Исследовали влияние гидроокиси кальция на микробный состав инфицированных каналов. При этом использовали современные методики молекулярной биологии. Результаты исследования показали, что использование гидроокиси кальция не может полноценно дезинфицировать канал. После 14-дневной повязки гидроокиси кальция, количество некоторых микробов (E.Corrodens, A. Actinomycetemcomitans, E. nodatum) увеличилось (Soriano de Souza et al. 2005). Результаты совпадают с данными Barbosa и соав. (1997) о том, что после временной повязки в 27% каналов наблюдается бактериальный рост [35, 58].

Возможно, одним из наиболее важных механизмов уклонения бактерий от защитной системы организма является образование биоплёнки. Биоплёнка – это микробиологическая популяция, связанная с органическим или неорганическим субстратом, окруженная продуктами жизнедеятельности бактерий. Собранные в биоплёнке микроорганизмы обладают повышенной устойчивостью к антимикробным средствам и защитным механизмам (Siqueira 2001) [53].

Самым эффективным средством против бактериальных биоплёнок (включая Е. faecalis) является гипохлорит натрия (Spratt et al. 2001) [60]. Данные других авторов показывают, что биоплёнки с E. faecalis выживают больше 77 дней в присутствии внутриканальной повязки гидроокиси кальция. В лучшем случае гидроокись кальция повлияет только на микробы, находящиеся на периферии биоплёнки (Distel et al. 2001) [16].

Abdullah и соав. (2005) изучали эффективность некоторых внутриканальных медикаментов (гидроокись кальция, 0,2% хлоргексидин, 17% ЭДТА, 10% повидон йодин, 3% гипохлорит натрия) против штаммов E. Faecalis, находящихся в составе бактериальных биоплёнок. В составе биоплёнки E. Faecalis 100% был уничтожен 3% гипохлоритом натрия через две минуты и 10% повидом йодина через 30 минут. Во всех случаях гидроокись кальция устранил бактерий частично [1, 16, 53].

Результаты данного исследования показали что:

1) уничтожать бактерий в составе биоплёнок труднее, чем в планктонных суспензиях, если средство не обладает свойством растворения тканей;

2) в случае повторного лечения инфицированных зубов гидроокись кальция не может 100% уничтожать стойкие бактерии (E. Faecalis), которые размножаются между посещениями;

3) важное значение имеет полноценное препарирование, очищение канала от всех штаммов в первом посещении (использованием обильных промываний гипохлоритом натрия) и предупреждение повторного инфицирования канала полноценной герметизацией коронки зуба с помощью качественных временных пломб [60] .

Хлоргексидин широко используется в пародонтологии, т.к. имеет антибактериальную активность. В эндодонтии его можно использовать в качестве ирриганта и внутриканальной повязки. Было показано, что хлоргексидин является эффективным против эндодонтической инфекции. Целью комбинирования гидроокиси кальция и 2% геля хлоргексидина является повышение антимикробной активности, особенно против резистентных микроорганизмов таких как E. faecalis. Хлоргексидин в форме геля имеет некоторые положительные свойства: низкую токсичность для периодонталных тканей, вязкость, которая держит активные вещества в постоянном контакте со стенками канала и дентинными канальцами, водорастворимость. Комбинация геля и гидроокиси кальция была протестирована против E. faecalis в инфицированном корневом дентине и продемонстрировала, что комбинирование медикаментов оказалось эффективным (Gomes et al. 2003) [26].

Pouresmail и соав. (2005) изучали эффективность 2% хлоргексидина и гидроокиси кальция против E. faecalis. Результаты показали, что 2% хлоргексидин был значительно эффективнее против микробов в дентинных канальцах, чем гидроокись кальция. Кроме того 2% хлоргексидин безопасен для окружающих зуб тканей [44].

Влияние остатков гидроокиси кальция на качество пломбирования корневого канала

Перед постоянной обтурацией гидроокись кальция удаляется из корневого канала с помощью гипохлорита натрия, физиологического раствора и эндодонтических инструментов. Тем не менее, эффективность этих процедур полностью не подтверждена. Lambrianidis et al. (1999) исследовали эффективность удаления некоторых препаратов гидроокиси кальция из корневых каналов. Те препараты кальция, которые содержали метил целлюлозу (например Calxyl), в большем количестве остались на стенках каналов. Результаты показывают, что ни один из методов, примененных для удаления гидроокиси кальция со стенок корневого канала, не эффективен, и 25-45% поверхности стенок корневого канала остается покрытым остатками гидроокиси кальция [7, 34].

Известно, что остаточный гидроокись кальция отрицательно влияет на затвердевание цинкоксид-эвгенольных силеров. Оставшаяся гидроокись кальция взаимодействует с эвгенолом пасты и образуется эвгенолат кальция. В клинике это выражается быстрым блокированием продвижения гуттаперчевого штифта на всю рабочую длину канала. Если остатки гидроокиси кальция не удаляются полностью, они уплотняются апикально или в углублениях канала, что механически мешает эффективному пломбированию каналов и может повлиять на результат эндодонтического лечения. Апикальную пробку из гидроокиси кальция предпочтительнее удалить, потому что она не обеспечит апикальный герметизм и снизит эффективность лечения. Результаты исследований показали, что удаление гидроокиси кальция со стенок канала при помощи комбинации ручных инструментов и промывания канала NaOCl и 17% ЭДТА может быть эффективней [7]. Полное удаление пасты из корневого канала невозможно ¬независимо от метода выполнения. От паст на основе масел остаётся больше остатков на стенках канала, которые могут повлиять на механические свойства силера и ухудшить апикальный герметизм (Hosoya et al. 2004) [31].

Иногда гидроокись кальция применяется как препарат для прямого покрытия пульпы. До сих пор считали, что благодаря ионам кальция образуется дентинный мост, защищающий пульпу от внешних раздражителей. Исследования на животных показали, что дентинный мост пронизан множественными канальцами. Диаметр канальцев достаточно широк и через них бактерии могут попасть в пульпу и инфицировать её. Кроме того, оказалось, что вторичный дентин, образовавшийся под силикатом, гидроокисью кальция или композитами, не отличается толщиной и качеством.

Для формирования дентинного моста присутствие ионов кальция и гидроксильных ионов не обязательно. Как защитная реакция на открытие дентинных трубочек белки плазмы оседают там и закупоривают их. Скорее всего, аналогичным образом вторичный дентин, образуется в ответ на травму во время препарирования полости или открытия пульпы. В данном случае гидроокись кальция обеспечивает только кратковременный антимикробный эффект (Walton & Torabinejad 2002) [47, 59].

Заключение

Микроорганизмы играют важную роль в развитии периапикальных патологий, и успех эндодонтического лечения зависит от сокращения числа микробов. Получить стерильный канал даже после полноценной хемомеханической обработки невозможно. Поэтому, с целю уничтожения оставшихся бактерий в эндодонтии используется гидроокись кальция. Гидроокись кальция используется для стерилизации корневого канала как антибактериальная временная повязка, во время апексификации, как материал для прямого покрытия пульпы.

Большинство научных данных, которые обосновывают и оправдывают применение гидроокиси кальция, были получены в ранние годы (1990-2004). Однако с появлением современных и более достоверных методов исследования (методы молекулярной биологии, иммунологии и лабораторной микробиологии) стала реальной объективная оценка данного препарата в лаборатории и в клинике. Многие привычные взгляды уступили место научным данным. Многосторонний анализ научной литературы последних лет показал, что гидроокись кальция имеет множество недостатков, которые ставят под сомнение его рутинное и массовое применение в эндодонтии.

1.Гидроокись кальция не может полноценно уничтожить оставшихся в канале грамм-положительных кокков (E. Faecalis) и некоторые грибков (C. Albicans), т.к. они устойчивы к высокому рН (9 – 11).

2. С помощью гидроокиси кальция значение pH в канале не поднимается выше 11, поскольку высокий pH нейтрализуется буферными системами дентина, присутствием некротических масс в канале, кислотными продуктами микробов. В результате антимикробная эффективность гидроокиси кальция снижается, микробы могут остаться в канале и повторно инфицировать его.

3. После 14-дневного применения повязки гидроокиси кальция в 27% каналов наблюдается бактериальный рост.

4. E. faecalis в составе биоплёнки выживает больше 77 дней в присутствии внутриканальной повязки гидроокиси кальция.

5.Гидроокись кальция не может предотвращать повторного инфицирования канала в случаях бактериальной утечки.

6. Физические свойства гидроокиси кальция не допускают его трёхмерно заполнять корневой канал, т.е. он активно действует только в основном канале и парапульпарном дентине. Это те места, которые подвергаются полноценной хемомеханической обработке.

7.Многие антимикробные препараты (например гипохлорит натрия на 30 минут, 2% гель хлоргексидина, камфорный парамонохлорфенол, антибиотики) эффективнее уничтожают оставшихся микробов в каналах, чем гидроокись кальция и могут заменить его.

8. Комбинированное использование гидроокиси кальция вместе с 2% гелем хлоргексидина или камфорным парамонохлорфенолом эффективнее, чем гидроокись в чистом виде.

9. После удаления временной повязки гидроокиси кальция 25 - 45% поверхности стенок корневого канала остается покрытым остатками пасты, которые могут ставить под сомнение апикальный герметизм.

10. Вторичный дентин, образовавшийся под гидроокисью кальция, силикатом или композитами не отличается толщиной и качеством. Для формирования дентинного моста присутствие ионов кальция и гидроксильных ионов не обязательно.

11. Длительное применение гидроокиси кальция (больше шести месяцев) приводит к повреждению органической матрицы дентина и снижению его прочностных характеристик.

Следовательно, во многих клинических ситуациях дополнительная дезинфекция канала гидроокисью кальция не обязательна. Кроме того, рутинное использование внутриканальных медикаментов на длительный период времени не является практичным и экономически выгодным.

Обсуждение статьи в форуме сайта Dental-revue

ЛИТЕРАТУРА

1. Abdullah M., Yuan-Ling Ng, Gulabivala K., Moles D., Spratt D. Susceptibilities of two Enterococcus faecalis phenotypes to root canal Medications // J. of Endod., № 1, vol. 31. - 2005. – P. 30-36

2. Barntiart B., Liewehr F., Joyce A., Roberts S., Chuang A., Dalle Lucca J. An In Vitro Evaluation of the Cytotoxicity of Various Endodontic Irrigants // J. of Endod., № 12, vol. 30. - 2004. – P. 1125

3. Bruyne M., De Moor R. & Raes F. Necrosis of the gingiva caused by calcium hydroxide: a case report // Int End J. - № 1, vol. 33. – 2000. – P. 67

4. Bussey K. A Comparison of Success With 1-Appointment and 2- Appointment Molar Root Canal Therapy // J. of Endod., № 12, vol. 30. - 2004. – P. 1126

5.Caliskan M. Prognosis of large cyst-like periapical lesions following nonsurgical root canal treatment: a clinical review // Int End J. - vol. 37. – 2004. – P. 408– 416

6. Chavez de Paz L., Dahien G., Molander A., Moller A & Bergenholtz G. Bacteria recovered from teeth with apical periodontitis after antimicrobial endodontic treatment // Int End J. - vol. 36. – 2003. – P. 500– 508

7.Chen L., Song J., Kim S., Iqbal M. Removal efficiency of calcium hydroxide intracanal dressing // J. of Endod., № 3, vol. 31. - 2005. – P. 223

8.Christopher P. McHugh, Zhang P., Michalek S. pH Required to Kill Enterococcus faecalis in Vitro // J. of Endod., № 9, vol. 31. - 2005. – P. 754-756

9. Chu G. , Fleury A., Murray P., Flax Nova Southeastern M. The Ability of Different Concentrations of NaOCl to Dissovle and Reduce the Weight of Bovine Pulp Tissue In Vitro // J. of Endod., № 12, vol. 30. – 2004. – P. 1126

10.Chu F., Tsang P., Chow T., Samaranayake L. Identification of cultivable microorganisms from primary endodontic infections with exposed and unexposed pulp space // J. of Endod., № 6, vol. 31. - 2005. – P. 424-429

11.Coldero L., McHugh, MacKenzie D & Saunders W. Reduction in intracanal bacteria during root canal preraration with and without apical enlargement // Int End J. - vol. 35. – 2002. – P. 437 – 446

12. Cwikla S., Belanger M., Giguere S., Progulske-Fox A., Vertucci F. Dentinal tubule disinfection using three calcium hydroxide formulations // J. of Endod., № 1, vol. 31. - 2005. – P. 50-52

13. De Moor R. & Raes F. Necrosis of the gingiva caused by calcium hydroxide: a case report // Int End J. - № 1, vol. 33. – 2000. – P. 67

14.Detwiler K., Johnson B., Neach C., Ashrafi S., BeGole E. The effect of calcium hydroxide paste as an intracanal medication on canal leakage using two resin sealers // J. of Endod., № 3, vol. 31. - 2005. – P. 223

15.Doyon G., Dumsha T., von Fraunhofer J. Fracture resistance of human root dentin exposed to intracanal calcium hydroxide // J. of Endod., № 3, vol. 31. - 2005. – P. 230

16.Dunavant T., Regan J., Glickman G., Solomon E., Honeyman A. Comparative evaluation of endodontic irrigants against E. faecalis biofilm // J. of Endod., № 3, vol. 31. - 2005. – P. 218

17.Eddy R., Joyce A., Roberts S., Buxton T. An in vitro evaluation of the antibacterial efficacy of Chlorine Dioxide on E. Faecalis in bovine incisors // Int End J. - № 9, vol. 31. – 2005. – P. 672 – 675

18.Eddy E., Buxton T., Joyce A., Roberts S. The Antibacterial Efficacy of Chlorine Dioxide as an Endodontic Irrigant //J. of Endod.,№ 12, vol. 30. - 2004. – P.1125

19. Ergucu Z., Hiller K., Schmalz G., Influence of dentin on the effectiveness of antibacterial agents // J. of Endod., № 2, vol. 31. - 2005. – P. 124-129

20.Etemadi S., Michel A., Chogle S., Jones J. An In Vitro Study of the Antimicrobial Action of Cloroform and Chloropercha // J. of Endod., № 12, vol. 30. - 2004. – P. 1125

21.Field J., Gutmann J., Solomon E. & Rakusin H. A clinical radiographic retrospective assessment of the success rate of single-visit root canal treatment // Int End J. - vol. 37. – 2004. – P. 70 – 82

22. Fridland L., Rosado R., Chem Eng MTA solubility: a long term study // J. of Endod., № 5, vol. 31. - 2005. – P. 376-379

23. Fouad A., Barry J. The effect of antibiotics and endodontic antimicrobials on the Polimerase Chain Reaction // J. of Endod., № 7, vol. 31. - 2005. – P. 510-513

24. Glennon J., Ng Y., Setchell D. & Gulabivala K. Prevalence of and factors affecting postpreparation pain in patients undergoing two-visit root canal treatment // Int End J. - vol. 37. – 2004. – P. 29– 37

25.Gomes B., Sato E., Ferraz C., Taixeira F., Zaia A. & Souza-Filho F. Evaluation of time required for recontamination of coronally sealed canals medicated with calcium hydroxide and chlorhexidine // Int End J. - vol. 36. – 2003. – P. 604– 609

26.Gomes B., Souza S., Ferraz C., Taixeira F., Zaia A., Valdrighi & Souza-Filho Effectiveness of 2% chlorhexidine gel and calcium hydroxide against Enterococcus faecalis in bovine root dentine in vitro // Int End J. - vol. 36. – 2003. – P. 267– 275

27.Haapasalo H., Siren E., Waltimo T., Orstavik D.& Haapasalo M. Inactivation of local root canal medicaments by dentine: an in vitro study // Int End J. - № 2, vol. 33. – 2000. – P. 126

28. Hauman C. & Love R. Biocompatibility of dental materials used in contemporary endodontic therapy: a review. Part 1. Intracanal drugs and substaces // Int End J. - vol. 36. – 2003. – P. 75 – 85

29. Heling I., Steinberg D., Kenig S., Gavrilovich I., Sela M. & Friedman M. Efficacy of a sustained-release device containing chlorhexidine and Ca(0H)2 in preventing secondary infection of dentinal tubules // Int End J. - vol. 25. – 1992. – P. 20 – 24

30.Hofmann B., Minah G., McClanahan S., Thorpe J., Johnson J. The In Vitro Efficacy of Chlorhexidine, Sodium Hypochlorit and Doxycycline Preparations Against Enterococcus faecalis // J. of Endod., № 12, vol. 30. - 2004. – P. 1124

31. Hosoya N., Kurayama H., Lino F. & Arai T. Effects of calcium hydroxide on physical and sealing properties of canal sealers // Int End J. - vol. 37. – 2004. – P. 178– 184

32.Huumonen S., Lenander-Lumikari M., Sigurdsson A. & Orstavik D. Healing of apical periodontitis after endodontic treatment: a comparison between a silicone-based and a zinc oxide-eugenol-based sealer // Int End J. - vol. 36. – 2003. – P. 296– 301

33. Kaufman B., Spangberg L., Fouad A. Enterococcus spp. in endodontically treated teeth with and without periradicular lesions // J. of Endod., № 3, vol. 31. - 2005. – P. 217

34. Lambrianidis T., Margelos J., Beltes P. Removal efficiency of calcium hydroxide dressing from the root canal // Int End J. - № 2, vol. 25. – 1999. – P. 85 – 88

35. Law A., Messer H. An evidence-based analysis of the antibacterial еffectiveness of intracanal medicaments // J. of Endod., № 8, vol. 31. – 2005. – P. 842-847

36. McGurkin-Smith R., Trope M., Caplan D.. Sigurdsson A. Reduction of intracanal bacteria using GT rotary instrumentation, 5,25% NaOCl, EDTA, and Ca(OH)2 // J. of Endod., № 5, vol. 31. - 2005. – P. 359-363

37. Menezes M., Valera M., Jorge A., Koga-Ito C., Camargo C. & Mancini M. In vitro evaluation of the effectiveness of irrigants and intracanal medicaments on microorganisms within root canals // Int End J. - vol. 37. – 2004. – P. 311– 319

38. Molven O., Halse A., Fristad I. & MacDonald-Jankowski D. Periapical changes following root-canal treatment observed 20-27 years postoperatively // Int End J, № 9, vol 35, 2002, p. 784-790

39. Naoum & Chandler N. Temporization for endodontics // Int End J. - vol. 35. – 2002. – P. 964 – 978

40. Paquette L., Yared G., Legner M., Fillery E., Friedman S. Antibacterial Effectiveness of Chlorhexidine Gluconate Interappointment Root Canal Dressing // J. of Endod., № 12, vol. 30. – 2004. – P. 1127

41.Peters L., Winkelhoff A., Buijs J. & Wesselik P. Effects of instrumentation, irrigation and dressing with calcium hydroxide on infection in pulpless teeth with periapical bone lesions // Int End J. – № 1, vol. 35. – 2002. – P. 13 – 21

42.Perez, M. Franchi & J. F. Peli Effect of calcium hydroxide form and placement on root dentine pH // Int End J. - № 6, vol. 34. – 2001. – P. 417

43. Pinheiro E., Gomes B., Drucker D., Zaia A., Ferraz C. & Souza-Filho F. Antimicrobial susceptibility of Enterococcus faecalis isolated from canals of root filled teeth with periapical lesions // Int End J.-vol.37.–2004. – P.756–763

44. Pouresmail M., Shabahang S., Torabinead M. Effects of various concentrations and combinations of chlorhexidine and citric acid on Enterococcus faecalis- infected teeth // J. of Endod., № 3, vol. 31. - 2005. – P. 218

45. Portenier L., Waltimo T., Orstavik D., Haapasalo M. The susceptibility of starved, stationary phase, and growing cells of Enterococcus faecalis to endodontic medicaments // J. of Endod., № 5, vol. 31. - 2005. – P. 380-386

46. Ricucci D. & Bergenholtz G. Bacterial status in root-filled teeth exposed to the oral environment by loss of restoration and fracture or caries- a histobacteriological study of treated cases // Int End J. - vol. 36. – 2003. – P.787– 802

47. Richard E. Walton, Mahmoud Torabinejad Priciples and Practice of endodontics // Saunders, 2002

48. Robert G., Liewehr F., Buxton T., McPherson J. Apical diffusion of calcium hydroxide in an in vitro model // J. of Endod., № 1, vol. 31. - 2005. – P. 57-60

49. Saleh I., Ruyter I., Haapasalo M. & Orstavik K. Survival of Enterococcus faecalis in infected dentinal tubules after root canal filling with different root canal sealers in vitro // Int End J. - vol. 37. – 2004. – P. 193 – 198

50. Sassone L., Fidel R., Fidel S., Vieira M. & Hirata R. The influence of organic load on the antimicrobial activity of different concentrantions of NaOCl and chlorhexidine in vitro // Int End J. - vol. 36. – 2003. – P. 848– 852

51. Schafer E., Bossmann K. Antimicrobial efficacy of chlorhexidine and two calcium hydroxide formulations against Enterococcus faecalis // J. of Endod., № 1, vol. 31. - 2005. – P. 53-56

52.Shipper G., Teixeira F., Arnold, R., Trope M. Periapical inflammation after coronal microbial inoculation of dog roots filled with gutta-percha or resilon // Int End J. - № 2, vol. 31. – 2005. – P. 91 – 95

53. Siqueira J. & Lopes H. Bacteria on the apical root surfaces of untreated teeth with periradicular lesions: a scanning electron microscopy study // Int End J. –№ 6, vol. 34. – 2001. – P. 556

54. Siqueria Jr. Microbial causes of endodontic flare-ups // Int End J. - vol. 36. – 2003. – P. 453 – 463

55. Siqueria Jr. Aetiology of root canal treatment failure: why well-treated teeth can fail // Int End J. - vol. 34. – 2001. – P. 1– 10

56. Siqueria Jr. & Lopes H. Mechanisms of antimicrobial activity of calcium hydroxide: a critical review // Int End J. - vol. 32. – 1999. – P. 361 – 369

57.Shon W., Lim S., Bae K., Baek S., Lee W. The expression of ?4 integrins by human polimorphonuclear neutrophils in response to sonicated extracts of Enterococcus faecalis // J. of Endod., № 5, vol. 31. - 2005. – P. 369-372

58.Soriano de Souza C., Teles R., Souto R., Chaves M., Colombo A. Endodontic therapy associated with calcium hydroxide as an intracanal dressing: microbiologic evaluation by the Checkerboard DNA-DNA hybridization technique // Int End J. - № 2, vol. 31. – 2005. – P. 79 – 83

59. Sonntag D., Kook K., Ney M., Stachniss V. Success rate of direct pulp capping with calcium hydroxide // J. of Endod., № 3, vol. 31. - 2005. – P. 246

60.Spratt D., Pratten J., Wilson M. & Gulabivala K. An in vitro evaluation of the antimicrobial efficacy of irrigants on biofilms of root canal isolates // Int End J.- vol. 34. –2001. – P. 300 – 307

61. Stiven Coen One visit endodontic treatment // The New Mentor Group, 2002

62. Tanomaru J., Leonardo M., Tanomaru F., Bonetti F. & Silva L. Effect of different irrigation solutions and calcium hydroxide on bacterial LPS // Int End J. - vol. 36. – 2003. – P. 733 – 739

63.Torres C., Apicella M., Yancich P. & Harry Parker M. Intracanal Placement of Calcium Hydroxide: A Comparison of Techniques, revisited // J. of Endod., № 1, vol. 31. - 2005. – P. 75-77

64. Trope M., Delano O., Orstavik D. Endodontic treatment of teeth with apical periodontitis: Single vs. multivisit treatment // J Endod. – № 5, vol. 25. – 1999 – P. 345 – 351

65. Vora M., Wenckus C., Johnson B., BeGole E., Fresco R. In VitroEffect of 3 Calcium Hydroxide Formulations on Root Dentin pH // J.of Endod., № 12, vol. 30. - 2004. – P. 1125

66. Weiger R., Rosendahl R. & Lost C. Influence of calcium hydroxide intracanal dressings on the prognosis of teeth with endodontically indused periapical lesions // Int End J. - vol. 33. – 2000. – P. 219 – 226

67. Williams J. , Trope M., Heffernan M. , Shugars D. Real-time quantitative PCR and culture analyses of Enterococcus faecalis in primary and refractory endodontic infections // J. of Endod., № 3, vol. 31. - 2005. – P. 217

68. Wuerch R., Apicella M., Mines P., Yancich P., Pashley D. Effect of 2% Chlorhexidine Gel as an Intracanal Medication on the Apical seal of the Root Canal System // J. of Endod., № 12, vol. 30. - 2004. – P. 1124

69.Yang J., Lin X., Sung J., Rosenberg P., Lin L. Histobacteriological Study of Failed Endodontically Treated Teeth with Overfillings // J. of Endod., № 12, vol. 30. – 2004. – P. 112

Copyright by Dental-revue © 2001